Skip to content

Quorum sensing y resistencia a antibióticos en Stenotrophomonas maltophilia: ¿Están conectados estos mecanismos?

Grupo Especializado:

Daniel Yero, Pol Huedo, Xavier Coves, Sonia Martínez-Servat, Oscar Conchillo-Solé, Celeste Gómez, Xavier Daura, Isidre Gibert

Grupo de Patogénesis Bacteriana y Antimicrobianos (PatoBAnt). Instituto de Biotecnología y Biomedicina y Departamento de Genética y Microbiología. Universitat Autònoma de Barcelona. Edifici Mòdul B, Parc de Recerca UAB. Bellaterra (Cerdanyola del Vallès), Barcelona

daniel.yero@uab.cat, isidre.gibert@uab.cat

Foto de grupo. De izquierda a derecha: Xavier Daura, Sara Segura, Òscar Conchillo-Solé, Daniel Yero, Celeste Gómez, Xavier Coves, Belén Mahía, Pol Huedo, Marina Bataller e Isidre Gibert

 

Introducción y antecedentes

Stenotrophomonas maltophilia es una especie metabólica y genéticamente diversa que habita en una amplia gama de ambientes, particularmente en la rizosfera, considerada su hábitat principal en la naturaleza. Es el único miembro de la familia Xanthomonadaceae conocido por ser un patógeno humano oportunista. Su prevalencia e incidencia global han aumentado significativamente en la última década, especialmente en pacientes con fibrosis quística (Hatziagorou et al., 2019). La amenaza que representa S. maltophilia para la salud humana es su baja susceptibilidad a casi todas las clases de antibióticos (Sánchez, 2015). Por estas razones, se ha clasificado como uno de los principales organismos multirresistentes (MDR) en entornos hospitalarios, y se ha incluido recientemente en la lista de los diez microorganismos resistentes prioritarios en UCIs (Rello et al., 2019).

En S. maltophilia se han reconocido varios factores de virulencia que podrían contribuir a la colonización de tejidos humanos, que incluyen, entre otros, varias enzimas extracelulares y la formación de biofilm. Es sabido que S. maltophilia forma biofilm en una amplia gama de superficies bióticas y abióticas, incluidos dispositivos médicos como catéteres, prótesis, etc. La formación de biofilm facilita la persistencia bacteriana y la resistencia a la acción de los antimicrobianos, por lo que se ha considerado como una forma de resistencia fenotípica (Sánchez, 2015). Al igual que para muchas bacterias gramnegativas, el sistema de quorum sensing (QS) se ha considerado también un importante factor regulador de la virulencia en S. maltophilia (Huedo et al., 2018). En general, los sistemas de QS son redes de comunicación que coordinan poblaciones y comunidades bacterianas a través de moléculas conocidas como autoinductoras (AI). Estas redes son uno de los principales mecanismos que controlan la patogénesis de muchas especies de importancia clínica (Rutherford and Bassler, 2012). Estudiar cómo estás redes controlan los aspectos relacionados con la virulencia, la persistencia y la tolerancia a antibióticos en S. maltophilia, es uno de los objetivos de nuestro grupo de investigación.

Resultados científicos del grupo y perspectivas futuras

En el sistema de QS principal de S. maltophilia la molécula AI es el ácido graso cis-11-metil-2-dodecanoico, conocido como DSF (del inglés diffusible signal factor). Los genes para la síntesis y percepción del DSF, así como el inicio de la cascada de regulación mediada por esta señal, forman parte de un clúster denominado rpf. Nuestro grupo ha demostrado que en S. maltophilia se pueden distinguir dos sub-poblaciones basadas en las diferencias en la secuencia de este clúster (Huedo et al., 2014). Estas diferencias genotípicas se traducen en una significativa diversidad funcional entre las cepas del tipo rpf-1 o rpf-2. Por ejemplo, las cepas de tipo rpf-2 no producen niveles detectables de DSF en condiciones de laboratorio y son más virulentas en un modelo animal con nematodos. Sin embargo, estas cepas son capaces de producir su propio DSF y activar los mecanismos mediados por el QS, cuando perciben el DSF producido por cepas rpf-1 (Huedo et al., 2015). Por otro lado, cepas rpf-1 mutantes en la sintasa del DSF dejan de secretar DSF, producen más biofilm y son menos virulentas (Huedo et al., 2014). Todo esto demuestra que la coordinación de la virulencia mediada por el DSF en S. maltophilia es más compleja y multifactorial de lo que se pensaba.

Más recientemente nuestro grupo ha demostrado, usando un panel de 79 cepas clínicas, que las cepas de tipo rpf-2 son efectivamente más virulentas en modelos animales, probablemente porque producen más biofilm. Sorprendentemente el tipo de clúster rpf también influencia el perfil de resistencia de las cepas, lo que nos hace pensar en una conexión entre el sistema de QS mediado por DSF y la resistencia a antibióticos. Sabemos que una de las variantes del clúster rpf fue adquirida por S. maltophilia mediante transferencia horizontal (Huedo et al., 2015), por tanto, no descartamos la hipótesis que durante estos eventos se hayan adquirido determinantes de resistencia. Nuestro grupo está ahora inmerso en estudiar con más profundidad el mecanismo de QS mediado por DSF en S. maltophilia e identificar los determinantes de virulencia y resistencia que podrían estar controlados por este sistema. Para ello estamos estudiando la expresión global de los genes en condiciones de cultivos que activan los sistemas de QS, como por ejemplo el inicio de la fase estacionaria o la presencia de moléculas AI. Por otro lado, se sabe ahora que S. maltophilia tiene mecanismos para inhibir o degradar moléculas AI secretadas por otras bacterias de su entorno (Huedo et al., 2018), y tenemos indicios que algunos tipos de ácidos grasos pueden interferir con el sistema DSF de la propia célula (Huedo et al., 2015). Todo esto nos ha hecho pensar en estrategias antimicrobianas alternativas basadas en la inhibición del QS. El grupo cuenta además con la experiencia de bioinformáticos que participan en buscar aquellos determinantes que podrían ser dianas atractivas para eliminar o inhibir estas bacterias.

En cuanto a la búsqueda de estrategias antimicrobianas basadas en la inhibición del QS, nuestro grupo ha dado los primeros pasos en colaboración con un grupo de la University College Cork en Irlanda (Huedo et al., 2019). En este trabajo se sintetizaron y evaluaron, entre otros, compuestos químicos basado en la molécula de DSF de S. maltophilia. Algunas de estas moléculas fueron capaces de interferir con la comunicación célula-célula alterando la formación de biofilm y potenciando la actividad de la colistina, uno de los antibióticos de último recurso contra patógenos gramnegativos MDR. Esta prueba de concepto valida la estrategia de interferir con el QS bacteriano para combatir infecciones difíciles de tratar causadas por organismos MDR formadores de biofilm. Por otro lado, abre una puerta en la búsqueda de estrategias que potencien el efecto de antibióticos como la colistina, para la cual se detectan cada vez más cepas resistentes. Nuestro grupo ha descrito recientemente que en S. maltophilia existe de manera casi generalizada el fenómeno de heterorresistencia a la colistina (Martínez-Servat et al., 2018). Hemos visto que en una población de células susceptibles a la colistina, coexiste o surge rápidamente una subpoblación de células muy resistentes. La heterorresistencia a los antibióticos es de una gran trascendencia clínica porque es responsable del fallo de muchos tratamientos y de la persistencia de algunas infecciones. Esta subpoblación resistente tiene además mayor capacidad para formar biofilm, lo que refuerza nuestra hipótesis de si el sistema de QS y la resistencia a algunos antibióticos tienen elementos en común en S. maltophilia.

Bibliografía representativa

Hatziagorou, E., Orenti, A., Drevinek, P., Kashirskaya, N., Mei-Zahav, M., De Boeck, K., et al. (2019). Changing epidemiology of the respiratory bacteriology of patients with cystic fibrosis-data from the European cystic fibrosis society patient registry. J. Cyst. Fibros. S1569-1993(19)30838-0.

Huedo, P., Coves, X., Daura, X., Gibert, I., and Yero, D. (2018). Quorum Sensing Signaling and Quenching in the Multidrug-Resistant Pathogen Stenotrophomonas maltophilia. Front Cell Infect Microbiol 8, 122.

Huedo, P., Kumar, V. P., Horgan, C., Yero, D., Daura, X., Gibert, I., et al. (2019). Sulfonamide-based diffusible signal factor analogs interfere with quorum sensing in Stenotrophomonas maltophilia and Burkholderia cepacia. Future Med Chem 11, 1565–1582.

Huedo, P., Yero, D., Martínez-Servat, S., Estibariz, I., Planell, R., Martínez, P., et al. (2014). Two different rpf clusters distributed among a population of Stenotrophomonas maltophilia clinical strains display differential diffusible signal factor production and virulence regulation. J. Bacteriol. 196, 2431–2442.

Huedo, P., Yero, D., Martinez-Servat, S., Ruyra, À., Roher, N., Daura, X., et al. (2015). Decoding the genetic and functional diversity of the DSF quorum-sensing system in Stenotrophomonas maltophilia. Front Microbiol 6, 761.

Martínez-Servat, S., Yero, D., Huedo, P., Marquez, R., Molina, G., Daura, X., et al. (2018). Heterogeneous Colistin-Resistance Phenotypes Coexisting in Stenotrophomonas maltophilia Isolates Influence Colistin Susceptibility Testing. Front Microbiol 9, 2871.

Rello, J., Kalwaje Eshwara, V., Lagunes, L., Alves, J., Wunderink, R. G., Conway-Morris, A., et al. (2019). A global priority list of the TOp TEn resistant Microorganisms (TOTEM) study at intensive care: a prioritization exercise based on multi-criteria decision analysis. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 38, 319–323.

Rutherford, S. T., and Bassler, B. L. (2012). Bacterial quorum sensing: its role in virulence and possibilities for its control. Cold Spring Harb Perspect Med. 2, a012427.

Sánchez, M. B. (2015). Antibiotic resistance in the opportunistic pathogen Stenotrophomonas maltophilia. Front Microbiol 6, 658.

Play Video

Política de privacidad

Esta página Web es titularidad de la SOCIEDAD ESPAÑOLA DE MICROBIOLOGÍA, cuyos datos de identificación son los siguientes:

  • Centro de Investigaciones Biológicas (CIB-CSIC)
  • c/Ramiro de Maeztu, 9 28040 Madrid.
  • Tel. 91 561 33 81 – Fax. 91 561 32 99
  • Registro Nacional de Asociaciones con el número nacional 579
  • CIF: G28648871

1. INFORMACIÓN Y CONSENTIMIENTO.

Mediante la aceptación de la presente Política de Privacidad, el Usuario queda informado y presta su consentimiento libre, informado, específico e inequívoco para que los datos personales que facilite a través de esta página Web (en adelante, el “Sitio Web”) sean tratados por la SEM.

2. OBLIGATORIEDAD DE FACILITAR LOS DATOS.

Los datos solicitados en los formularios de la Web son con carácter general, obligatorios (salvo que en el campo requerido se especifique lo contrario) para cumplir con las finalidades establecidas. Por lo tanto, si no se facilitan los mismos o no se facilitan correctamente no podrán atenderse las mismas, sin perjuicio de que podrá visualizar libremente el contenido del Sitio Web.

3. ¿CON QUÉ FINALIDAD SE TRATARÁ LOS DATOS PERSONALES DEL USUARIO Y DURANTE CUÁNTO TIEMPO?

Los datos personales facilitados a través del Sitio Web serán tratados por la SEM conforme a las siguientes finalidades:

  • Gestionar y tramitar las solicitudes de alta de nuevos socios, desde los formularios “nuevos socios”, así como gestionar las cuotas y cobros derivados.
  • Remitir periódicamente a los socios, incluso por medios electrónicos, información, eventos o noticias que puedan resultar de su interés, si el futuro socio da su consentimiento marcando la casilla de verificación correspondiente, o en su caso, se oponga o revoque su consentimiento.

4. ¿QUÉ DATOS DEL USUARIO SE TRATARÁN?

SEM tratará las siguientes categorías de datos del Usuario:

  • Datos identificativos: nombre, apellidos y DNI.
  • Datos de contacto: dirección postal, dirección de correo electrónico y teléfono.
  • Datos profesionales: lugar de trabajo y datos de contacto profesionales.
  • Datos académicos: titulación y especialización.
  • Datos de facturación.

5. ¿CUÁL ES LA LEGITIMACIÓN DEL TRATAMIENTO DE LOS DATOS DEL USUARIO?

El tratamiento de los datos del Usuario por parte de la SEM está basado en el consentimiento que se le solicita y que puede retirar en cualquier momento. No obstante, en caso de retirar su consentimiento, ello no afectará a la licitud de los tratamientos efectuados con anterioridad.
Los consentimientos obtenidos para las finalidades mencionadas son independientes por lo que el Usuario podrá revocar solo uno de ellos no afectando a los demás.

6. ¿A QUÉ DESTINATARIOS SE COMUNICARÁN LOS DATOS DEL USUARIO?

Los datos de los socios podrán ser comunicados a las siguientes empresas en los supuestos indicados:

• A las entidades bancarias correspondientes con la finalidad de gestionar el cobro de recibos domiciliados.

Los datos del Usuario no serán comunicados a ninguna otra entidad, salvo obligación legal.

7. RESPONSABILIDAD DEL USUARIO.

El Usuario y el Candidato a socio:
– Garantiza que es mayor de 18 años y que los datos que facilita a la SEM son verdaderos, exactos, completos y actualizados. A estos efectos, el Usuario responde de la veracidad de todos los datos que comunique y mantendrá convenientemente actualizada la información facilitada, de tal forma que responda a su situación real.
– Será responsable de las informaciones falsas o inexactas que proporcione a través del Sitio Web y de los daños y perjuicios, directos o indirectos, que ello cause a la SEM o a terceros.

8. COMUNICACIONES.

Una de las finalidades para las que la SEM trata los datos personales proporcionados por parte de los Usuarios es para remitirles comunicaciones electrónicas con información relativa a congresos y otros eventos, programas de subvenciones, divulgación científica, premios o noticias relevantes para los destinatarios.
En caso de que el destinatario desee dejar de recibir comunicaciones informativas por parte de la SEM puede solicitar la baja del servicio enviando un email a secretaria.sem@semicrobiologia.com o pulsando en el enlace de “baja” incluido en las comunicaciones.

9. EJERCICIO DE DERECHOS.

El Usuario puede enviar un escrito en cualquier momento y de forma gratuita a la SEM, Centro de Investigaciones Biológicas (CIB-CSIC) – c/Ramiro de Maeztu, 9 28040 Madrid, adjuntando fotocopia de su documento de identidad, para solicitar sus derechos de acceso, rectificación, supresión, oposición, limitación, portabilidad de sus datos.
Además puede, reclamar ante la Agencia Española de Protección de Datos, a través de la siguiente dirección: Agencia Española de Protección de Datos, C/ Jorge Juan, 6, 28001-Madrid, cuando el interesado considere que la SEM ha vulnerado los derechos que le son reconocidos por la normativa aplicable en protección de datos.

10. MEDIDAS DE SEGURIDAD.

La SEM tratará los datos de Usuarios, Candidatos y Socios en todo momento de forma absolutamente confidencial y guardando el preceptivo deber de secreto respecto de los mismos, de conformidad con lo previsto en la normativa de aplicación, adoptando al efecto las medidas de índole técnica y organizativas necesarias que garanticen la seguridad de sus datos y eviten su alteración, pérdida, tratamiento o acceso no autorizado, habida cuenta del estado de la tecnología, la naturaleza de los datos almacenados y los riesgos a que están expuestos.

Solicitar inscripción en el curso Quorum sensing y resistencia a antibióticos en Stenotrophomonas maltophilia: ¿Están conectados estos mecanismos?